КАРТОЧКА
ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ
Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.
ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ
Номер 21-14-00219
НазваниеИзучение структуры и динамики биологических систем, моделирующих репарацию ДНК методами магнитного резонанса
РуководительБагрянская Елена Григорьевна, Доктор физико-математических наук
Организация финансирования, регион федеральное государственное бюджетное учреждение науки Новосибирский институт органической химии им. Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук, Новосибирская обл
Период выполнения при поддержке РНФ | 2021 г. - 2023 г. |
Конкурс№55 - Конкурс 2021 года «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований отдельными научными группами».
Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-204 - Биофизика
Ключевые словаЯМР, ЭПР, спиновые зонды, спиновые метки, нитроксильные радикалы, триарилметильные радикалы, белки, нуклеиновые кислоты, репарация ДНК, повреждения ДНК
Код ГРНТИ34.17.00
СтатусУспешно завершен
ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ
Аннотация
ДНК постоянно подвергается воздействию как естественных клеточных метаболитов так и внешних факторов, вызывающих ее повреждения, частота которых достигает по некоторым оценкам десятков тысяч событий в день на клетку, что является причиной многих заболеваний. И хотя многие вопросы механизма репарации ДНК уже поняты, пока нет ответа на целый ряд вопросов, и поэтому эта область до сих пор требует усилий ученых в области молекулярной и клеточной биология. Разработка новых методов и подходов к исследованию структуры и динамики комплексов ДНК с ферментами репарации является актуальной и востребованной задачей.
Цель проекта – решение актуальных задач в области изучения структуры и динамики биологических систем, моделирующих репарацию ДНК с использованием новых подходов, разработанных авторами проекта и применением специально сконструированных парамагнитных стабильных тритильных и нитроксильных радикалов и диамагнитных фторных меток методами импульсной ЭПР спектроскопии и многомерной ЯМР спектроскопии. В проекте планируется исследование структуры и динамики ранее неисследованных объектов, моделирующих репарацию ДНК, а также разработка новых подходов к исследованию таких систем. Достижение поставленных целей требует проведения междисциплинарного комплексного исследования, включающего функционально-ориентированный синтез спиновых меток, разработку способов их селективного введения в ДНК и белки, проведения экспериментов с применением методов многомерной ЯМР спектроскопии и импульсной дипольной ЭПР спектроскопии, расчеты методом молекулярной динамики. Планируется синтез пространственно-затруднённых нитроксильных радикалов пирролинового и пирролидинового рядов, характеризуемых достаточной и рекордной устойчивостью в биологических образцах; спиновых рН-чувствительных меток для исследования электростатических взаимодействий в комплексе ДНК с белками; узколиниевых сверхстабильных водорастворимых тритильных радикалов, предназначенных для использования в качестве спиновых зондов биополимеров с гибким и жестким линкером; новых фторных меток и способов их введения в биополимеры; спиновых меток с возможность их ковалетной пришивки к биополимеру по двум положениям и обеспечивающим отсутствие мобильности метки, и позволяющих исследовать динамику белков. Планируется решение как структурных задач, так и исследование динамики молекул в свободных ДНК и белках: эндонуклеаза V (DenV) хлореллавируса, урацил-ДНК-гликозилаза (Ung) E. coli, формамидопиримидин-ДНК-гликозилаза (Fpg) E. coli, эндонуклеаза VIII (Nei) E. coli, эндонуклеаза VIII-подобные белки 1 и 2 (NEIL1 и NEIL2) тирозил ДНК фосфодиэстеразу 1с человека и их комплексах с ДНК.
Исследования будут направлены на изучение структурных и динамических аспектов организации ДНК-белковых комплексов, принимающих участие в репарации ДНК, изучение динамики белков в свободном состоянии, и в комплексе с неспецифичной ДНК и со специфичной ДНК. Методами многомерной ЯМР будет изучена динамика открытия-закрытия неспецифичной ДНК и специфичной ДНК. В качестве специфичной будет использован тетрагидрофурановый АП-сайт и метоксиаминовое производное АП сайта. Метод многомерной ЯМР и импульсной дипольной ЭПР спектроскопии планируется применить для исследования белков репарации, состоящих из хорошо структурированных белковых активных центров (30-40 кДа), связанных между собой гибкими неупорядоченными петлями примерно в 20-30 остатков. Применение методов магнитного резонанса позволит получить информацию о динамике поведения петли и взаимном расположение активных центров для комплексов белков с поврежденными и неповрежденными ДНК. Эта информация будет использована для понимания функции петли и механизма репарации ДНК.
Будет исследована кинетика раскрытия поврежденных пар в ДНК и изучена ее роль в узнавании повреждений ферментами репарации. Методом многомерной ЯМР планируется измерить динамику раскрытия-закрытия пар oxoG:C и oxoG:A в контекстах с разным стэкингом. Полученные данные будут сравнены с ранее проведенной серией термодинамических данных по стэкингу oxoG:C. Кроме того будет исследована динамика раскрытия-закрытия пар урацила с разными основаниями (сравнение пар U:A и U:G).
Методы магнитного резонанса будут применены для изучения механизмов непрямого узнавания поврежденной ДНК (THF, U и oxoG) и белками Ung и Fpg. Планируется изучить динамику остова неповрежденной и поврежденной ДНК, содержащей метоксиаминовое производное АП сайта, U и oxoG, с использованием набора дуплексов с включенными в разных положениях 2'-дезокси-2'-фторнуклеотидами методом ЯМР спектроскопии в свободном виде и в присутствии ферментов репарации (Ung, Fpg); измерить распределение расстояний между спиновыми метками, введёнными на концах ДНК для специфичной и неспецифичной ДНК методом импульсной ЭПР спектроскопии; с применение меток с жесткой пришивкой методом стационарного ЭПР при комнатной температуре, в также импульсного ЭПР при низких температурах будет исследован характер подвижности и измерено время корреляции движения ДНК и активного центра белков Ung и Fpg. Можно будет сделать выводы о том, насколько а) повреждения ДНК и б) связанные с ДНК белки разобщают ее на динамические куски, то есть, снижает взаимную корреляцию броуновских колебаний между частями ДНК по сторонам от себя. Будет изучена роль ионизируемых групп в каталитическом механизме ферментов репарации. ЭПР-метки, чувствительные к pH/электростатике и к близости молекул воды на основе имидазолиновых и имидазолидиновых нитроксильных радикалов будут введены на 5'-конец ДНК, которая будет использована для сбора конструкции ДНК с разрывом и последующего формирования комплексов с белками. Научная новизна планируемых исследований:
- впервые в мире экспериментально, а не расчётно измерить pH в активном центре фермента. Кроме того методами модуляции спинового эха (ESEEM) будет изучена доступность воды в активном центре.
-впервые будет изучена пространственная структура эндонуклеазы V хлорелловируса – потенциально ценного инструмента для молекулярно-биологических исследований и анализа генотоксичности промышленных химических соединений.
- впервые будет изучена пространственная структура метоксиаминового производного АП-сайта – повреждение ДНК, индуцируемое потенциальным противоопухолевым агентом метоксиамином, который в настоящее время проходит клинические испытания.
- впервые будет изучена способность повреждений и ДНК-связывающих белков нарушать корреляцию движений внутри молекулы ДНК по сторонам от места повреждения или связывания белка. Это позволит впервые исследовать возможность дистантного непрямого узнавания повреждений ДНК или наличия связанных с ДНК белков.
- будут получены данные, позволяющие проверить две существующие альтернативные кинетические модели узнавания поврежденных оснований ДНК-гликозилазами – ключевыми ферментами репарации ДНК.
- будет опробован метод ENDOR на паре фторная метка- триарилметильный радикал на модельных системах и на системах репарации ДНК.
Результаты исследований предполагается опубликовать в качестве серии статей в ведущих высокорейтинговых журналов (Nucleic Acids Research (IF=11.278), Angew. Chem. Int. Ed. (IF=13.734), J. Phys. Chem. Lett. (IF=6.585), J. Phys. Chem. C (IF=4.814) и др.)
Ожидаемые результаты
Следует ожидать, что все запланированные результаты будут получены на самом высоком научном уровне, поскольку все поставленные задачи являются актуальными, а уровень публикаций коллектива - высоким.
1. Будет разработан синтез целого ряда новых спиновых меток и диамагнитных меток с фторными заместителями:
- новых пространственно-затруднённых нитроксильных радикалов пирролинового и пирролидинового рядов, характеризуемых достаточной и рекордной устойчивостью в биологических образцах;
- новых спиновых рН -чувствительных меток для исследования электростатических взаимодействий в комплексе ДНК с белками;
- новых узколинеевых сверхстабильных водорастворимых тритильных радикалов, предназначенных для использования в качестве спиновых зондов биополимеров с гибким и жестким линкером;
- новых фторных меток и способов их введения в биополимеры;
- новых спиновых меток с возможностью их ковалентной пришивки к биополимеру по двум положениям и обеспечивающих отсутствие мобильности метки, и позволяющих исследовать динамику белков.
2) Будут исследованы структурные и динамические аспекты организации ДНК-белковых комплексов, принимающих участие в репарации ДНК:
- динамика белков в свободном состоянии, и в комплексе с неспецифичной ДНК и со специфичной ДНК. Методами многомерной ЯМР будет изучена динамика открытия-закрытия неспецифичной ДНК и специфичной ДНК. В качестве специфичной будет использован тетрагидрофурановый АП-сайт и метоксиаминовое производное АП сайта.
- впервые будет изучена пространственная структура эндонуклеазы V хлорелловируса – потенциально ценного инструмента для молекулярно-биологических исследований и анализа генотоксичности промышленных химических соединений.
-впервые будет изучена пространственная структура метоксиаминового производного АП-сайта – повреждение ДНК, индуцируемое потенциальным противоопухолевым агентом метоксиамином, который в настоящее время проходит клинические испытания.
- методом многомерной ЯМР и импульсной дипольной ЭПР спектроскопии будут исследованы ферменты репарации, состоящих из хорошо структурированных белковых активных центров (30-40 кДа), связанных между собой гибкими неупорядоченными петлями примерно в 20-30 остатков. Будет получена информация о динамике поведения петли и взаимном расположение активных центров для комплексов белков с поврежденными и неповрежденными ДНК. Будут сделаны выводы о функции петли и механизме репарации ДПК.
3. Будет получена информация о кинетике раскрытия поврежденных пар в ДНК и ее роли в узнавании повреждений ферментами репарации.
- методом многомерной ЯМР будет измерена динамика раскрытия-закрытия пар oxoG:C и oxoG:A в контекстах с разным стэкингом. Полученные данные будут сравнены с ранее проведенной серией термодинамических данных по стэкингу oxoG:C.
- методом многомерной ЯМР будет исследована динамика раскрытия-закрытия пар урацила с разными основаниями (сравнение пар U:A и U:G). Сравнение с кинетическим моделированием позволит сделать выводы о том, узнается ли урацил при захвате спонтанно открытой пары оснований, или фермент все же активно открывает пару.
- впервые будут получены данные, позволяющие проверить две существующие альтернативные кинетические модели узнавания поврежденных оснований ДНК-гликозилазами – ключевыми ферментами репарации ДНК.
4. Будут изучены механизмы непрямого узнавания поврежденной ДНК белками (ДНК с THF, U и oxoG, белки Ung и Fpg):
- будет исследована динамика остова неповрежденной и поврежденной ДНК, содержащей метоксиаминовое производное АП сайта, U и oxoG, с использованием набора дуплексов с включенными в разных положениях 2'-дезокси-2'-фторнуклеотидами методом ЯМР спектроскопии в свободном виде и в присутствии ферментов репарации (Ung, Fpg);
- методом импульсной ЭПР спектроскопии будут измерены распределения расстояний между спиновыми метками на основе нитроксильных и тритильных радикалов, введённых на концах для специфичной и неспецифичной ДНК;
- методом стационарного ЭПР при комнатной температуре, а также импульсного ЭПР при низких температурах будет исследован характер подвижности и измерено время корреляции движения ДНК и активного центра белков Ung и Fpg с использованием синтезированных спиновых меток с линкерами, обеспечивающими жесткую пришивку к ДНК и к белкам. Будут сделаны выводы о том, насколько а) повреждения ДНК и б) связанные с ДНК белки разобщают ее на динамические куски, то есть, снижает взаимную корреляцию броуновских колебаний между частями ДНК по сторонам от себя.
5. Изучение роли ионизируемых групп в каталитическом механизме ферментов репарации:
- методом ЭПР будет измерен pH в активном центре фермента с использованием синтезированных спиновых меток на основе имидазолиновых и имидазолидиновых нитроксильных радикалов, чувствительных к pH/электростатике и к близости молекул воды.
- методом модуляции спинового эха (ESEEM) будет изучена доступность воды в активном центре.
- впервые в мире экспериментально, а не расчётно будет измерен pH в активном центре фермента, а методами модуляции спинового эха (ESEEM) будет изучена доступность воды в активном центре.
НАУЧНАЯ ЗНАЧИМОСТЬ
Решение актуальных задач в области изучения структуры и динамики биологических систем, моделирующих репарацию ДНК с использованием новых подходов, разработанных авторами проекта, позволит существенно расширить область применения магнитного резонанса к важнейшим задачам биомедицины. Анализы структурных изменений, вызванных повреждениями ДНК, позволяют лучше понять механизмы репарации и имеет огромную научную значимость, поскольку является необходимым заделом для разработки лекарств против целого ряда заболеваний. Так например, известно, что нередко система репарации ДНК не работает в раковых клетках, поэтому ДНК подвергается мутациям и неуязвимости рака в ходе химиотерапии. Понимание механизмов репарации и возможность подавление механизмов репарации поможет замедлить распространение рака. Изучение пространственной структуры метоксиаминового производного АП-сайта – повреждение ДНК, индуцируемое потенциальным противоопухолевым агентом метоксиамином, который в настоящее время проходит клинические испытания важно для понимания действия этого препарата.
Изучение пространственной структуры эндонуклеазы V хлорелловируса важно поскольку он является потенциально ценным инструментом для молекулярно-биологических исследований и анализа генотоксичности промышленных химических соединений
ОБЩЕСТВЕННАЯ ЗНАЧИМОСТЬ
Результаты проекта будут являться фундаментальным научным заделом для дальнейших
приложений в области терапии социально-значимых заболеваний. В частности, они могут найти применение в ряда онкологических заболеваний. Проект включает пять молодых ученых, два студента и два аспиранта. Планируется, что по окончанию работы над проектом и по результатам работы будет защищено две кандидатских и одна докторская диссертация.
ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ
Аннотация результатов, полученных в 2021 году
Работа по проекту проводилась в полном соответствии с заявленным планом по следующим направлениями:
1)Молекулярный дизайн и синтез новых триарилметильных и диамагнитных фторных меток:
2)Изучение структурных и динамических аспектов организации ДНК-белковых комплексов, принимающих участие в репарации ДНК.
3)Изучение кинетики раскрытия поврежденных пар в ДНК и ее роли в узнавании повреждений ферментами репарации.
4)Изучение механизмов непрямого узнавания поврежденной ДНК белками.
5) Изучение роли ионизируемых групп в каталитическом механизме ферментов репарации.
1. В соответствии с планом исследований были синтезированы фторсодержащие ТАМ 1,3,5, отличающиеся сравнительно короткими расстояниями между неспаренным электроном и атомом (атомами) фтора. Синтез тритила 1 предполагал предварительную активацию монокарбоновой кислоты 6 системой оксалил хлорид/ДМФА. Последующая реакция с амином 1.1 приводила к получению целевого ТАМ 1 с почти количественным выходом. Близкий подход был заложен в схему получения тритила 5, однако этапу этерификации предшествовала стадия перевода ТАМ 6 в форму хлорангидрида с использованием системы хлористый тионил/триэтиламин. Получение эфира 3 достигнуто нуклеофильным замещением атома брома в бензилбромиде 3.1 карбоксилатной формой 6.
Проведены эксперименты ENDOR на синтезированных системах и сделан вывод о диапазоне расстояний, которые можно измерять таким методом. Возможность использования ENDOR в W-диапазоне с меткой 19F и ТАМ была исследована для синтезированных модельных соединений 1–5 и человеческом сывороточном альбумине (ЧСА), меченном ТАМ. Показано, что проведение экспериментов в сильных магнитных полей позволяет экспериментально разрешить резонансные линии от ядер 19F и протонов. Длительное время релаксации тритилов помогает увеличить задержки между импульсами в экспериментах Mims ENDOR. В отличие от нитроксидов, возможно получение спектров только в одном резонансном положении из-за низкой анизотропии g-фактора ТАМ и существенному сокращению времени необходимого для проведения экспериментов. Для всех модельных структур были зарегистрированы резонансные линии на частоте 19F в спектрах ENDOR W-диапазона.
ТАМ имеет довольно большой размер, а электронная спиновая плотность распределена по π-системе радикала ТАМ, поэтому, мы провели подробный теоретический анализ применимости приближения точечных диполей к модельным системам ТАМ, меченным фтором. Было обнаружено, что можно рассматривать структуру тритильного радикала как сферическую для расстояний более 0,8 нм, тогда как для расстояний меньше 0,8 нм неоднородное распределение спиновой плотности приводит к неаксиальности дипольного тензора, что может влиять на полученные результаты при измерении расстояний, и должно быть учтено явно при анализе экспериментальных данных.
Мы провели сравнение экспериментальных данных, полученных методами ENDOR и измерения ЯМР с усилением парамагнитной релаксации (PRE) для двух радикалов: 1 и 5. Для радикала 1 было невозможно оценить расстояние между центральным углеродом ТАМ и фтором из-за слишком высокого значения константы изотропного сверхтонкого взаимодействия на ядрах фтора, тогда как для радикала 5 расстояния, полученные обоими методами, хорошо согласуются с расстояниями, рассчитанными с помощью конформационного анализа. Более того, для радикала 5 в ENDOR мы наблюдали сигнал как от CF2, так и от CF2H-группы и получили усредненные расстояния, как в экспериментах PRE ЯМР. Мы применили разработанный метод для исследования тиольного обмена в человеческом сывороточном альбумине (ЧСА). Показано, что измерения ENDOR в W-диапазоне фторированного N-гомоцистеинилированного ЧСА позволяет исследовать процесс тиольного обмена между двумя белками. Анализ результатов , полученных методом ENDOR всех соединений подтвердил наличие обмена между молекулами ЧСА через дисульфидную связь и появление ЧСА, содержащего фторную метку и парамагнитный центр в одной и той же молекуле. Кроме того, эквивалентность трех остатков гомоцистеина в меченном фтором HSA была доказана с помощью спектроскопии ENDOR в W-полосе и HSA-OX063.
Результаты синтеза включены в опубликованную обзорную статью: В. М. Тормышев, Е. Г. Багрянская, «Тритильные радикалы: синтез, свойства и применение» Известия Академии наук, Серия химическая, 2021, N 12, стр. 2278.
По результатам разработки нового подхода к измерению расстояний в биомолекулах подготовлена статья и послана в журнал Physical Chemistry Chemical Physics (Q1). «Application of W-band 19F electron nuclear double resonance (ENDOR) spectroscopy to distance measurement using a trityl spin probe and a fluorine label, N.B. Asanbaeva, A.A. Sukhanov, A.A. Diveikina, O. Yu. Rogozhnikova, D.V. Trukhin , V.M. Tormyshev, A.S. Chubarov, A.G. Maryasov, A.M. Genaev, A.V. Shernyukov , G.E. Salnikov , А. A. Lomzov, D.V. Pyshnyi, E.G. Bagryanskaya» Статья находиться на рецензирование, а ее текст статьи находится в приложение.
2. Были изучены структурные и динамических аспекты организации некоторых ДНК-белковых комплексов, принимающих участие в репарации ДНК. Были синтезированы олигонуклеотиды с тетрагидрофурановым АП-сайт и метоксиаминовым производным АП сайта, и комплементарные спин-меченные олигонуклеотиды со спиновыми метками на основе нитроксильных и триарилметильных радикалов. Для установления структуры эндонуклеазы V хлореллавируса, проведен ряд экспериментов ЯМР в жидкости, которые сравнивались с литературными данными ЯМР в жидкости относительного похожего белка эндонуклеазы V бактериофага T4 (BMRB Entry 5244). Была использована схема изотопного обогащения включающая дейтерирование, из-за того, что выше 20°С раствор белка превращался в гель. Для эндонуклеазы V хлореллавируса был получен однородно изотопно-обогащенный образец [U-15N,13C] и получен спектр 15N-HSQC. Из анализа спектра сделан вывод о количестве пиков >160 (теоретическое с учетом сигналов от боковых цепей 174), дисперсия химических сдвигов которых соответствует упорядоченному белку. Таким образом, полученные на первом году выполнения проекта данные показывают перспективность дальнейшего изучения структуры с помощью ЯМР в жидкости и в настоящее время проводится оптимизация условий в образце для записи необходимых спектров.
3. В рамках изучения роли кинетики раскрытия поврежденных пар в ДНК в узнавании повреждений ферментами репарации, с помощью метода ЯМР в жидкости были проведены исследования на модельных ДНК дуплексах. Данные о скорости раскрытия-закрытия пар оснований в ДНК были получены, путем измерения скорости обмена имино протонов T и G с протонами воды в зависимости от концентрации катализатора обмена. Для измерения скорости обмена имино протонов с водой использовалась методика CLEANEX, в которой предусмотрена компенсация влияния внутримолекулярной кросс-релаксации и спиновой диффузии, а также подавления эффекта дампинга за счет интенсивного сигнала воды. Была изучена динамика раскрытия-закрытия пар oxoG:C и oxoG:A в контекстах с разным стэкингом для четырех самокомплементарных ДНК-дуплексов, для каждого из которых были определены температуры плавления. Динамика открытия - закрытия пар оснований ДНК изучалась посредством получения констант видимых скоростей обмена kex иминопротонов гуанозинов (G) и тимидинов (T) с водой в присутствии катализатора обмена. Из аппроксимации экспериментальных данных зависимостей I/I0 от τ уравнением (1) был получен набор величин kex при разных добавлениях DFEA. Катализатором обмена является осно́вная форма DFEA. Получены значения kopen, kclose, Keq для иминопротонов образцов C*AGG и A*AGG представлены в таблице 1. Значение Keq для иминопротона G образца A*CGT составило (Keq= 1.044±0.011 x 10-6)
4. Были проведены эксперименты DEER/PELDOR и измерены распределения расстояний между спиновыми метками, введёнными на концах ДНК для специфичной и неспецифичной ДНК методом импульсной ЭПР спектроскопии с использованием нитроксильных и тритильных спиновых меток для некоторых белков с дуплексами.
Были синтезированы олигонуклеотиды спин-меченных метками ТАМ и олигонуклеотиды спин-меченные никтроксильными радикалами по 3’ и 5’ концам, а также комплементарные им олигонуклеотидов, содержащие различные молекулы, моделирующие повреждения в середине нуклеотидной последовательности. Методами импульсной ЭПР спектроскопии (PELDOR для нитроксил-меченных дуплексов и DQC для тритилмеченных дуплексов) были измерены расстояния между спиновыми метками, и их распределение. Из полученных данных видно, что наблюдается зависимость расстояний и их распределений от структуры повреждений. В настоящее время проводятся МД расчеты дуплексов и их комплексов с белками. Из сравнения экспериментальных данных и расчетов в следующем году будут сделаны выводы о структуре исследованных экспериментально комплексов при различных типах повреждения.
5. Для изучения роли ионизируемых групп в каталитическом механизме ферментов репарации был проведены подготовительные работы для синтеза ДНК дуплексов спин-меченных на 5'-конец ДНК спиновыми метками на основе имидазолиновых и имидазолидиновых нитроксильных радикалов, чувствительными к pH/электростатике и к близости молекул воды. Были синтезированы следующие метки: 3-амино-Проксил, 3-иодацетамидометил-2,2,5,5-тетраметил-2,5-дигидропирролин-1-оксил (IAM-TPO) (для присоединения по фосфатным остаткам), 3-(метансульфонилтио)метил-2,2,5,5-тетраметил-2,5-дигидропирролин-1-оксил MTSL, 2,2,5,5-тетраметил-3,4-бис-((метансульфонилтио)метил)-2,5-дигидропиррол-1-оксил (НО-1944) (для мечения «дикого» фермента), 3-этинил-2,2,5,5-тетраметил-2,5-дигидропирролин-1-оксил (ТРА), 14-этинил-7-азадиспиро[5.1.5.2]пентадецен-14-7-оксил (UTPA) (для жёсткого присоединения к нуклеотидам). Кроме того, для решения задач проекта были разработаны новые рН-чувствительные спиновые метки, принимая во внимание особенности исследуемых систем.
С целью введения pH-чувствительных ЭПР-меток в ДНК и дальнейшего исследования с их помощью состояний ионизации активного центра ферментов были синтезированы олигонуклеотиды, несущие на 5′- или 3′-конце остатки гексиламина для последующей конъюгации с ЭПР-метками. Последовательности модифицированных и комплементарных олигонуклеотидов подбирались исходя из известных структур ДНК-гликозилаз бактерий (Fpg, Nei) и человека (NEIL1, NEIL2) с тем, чтобы конъюгированная группа располагалась в активном центре или в непосредственной близости от него. Были получены препараты ферментов Fpg, Nei, NEIL1 и NEIL2 как дикого типа, так и несущие универсальную для них инактивирующую аминокислотную замену Glu2→Gln. В литературе предполагается, что Glu2 выступает в реакциях, катализируемых данными ферментами, как донор протона, и исследование зарядового состояния этого остатка является одной из основных целей данной части проекта. В настоящее время проводится исследование связывания указанных белков с собранными олигонуклеотидными дуплексами методом микроскопического термофореза. В 2022 году планируется введение спиновых меток и измерения методом ЭПР-спектроскопии, на основание чего будут сделаны выводы о роли ионизируемых групп в каталитическом механизме ферментов репарации.
По результатам синтеза отправлена статья в журнал Gels (Q1). “4-Dialkylamino-2,5-dihydroimidazol-1-oxyls with Functional 2 Groups at the Position 2 and at the Exocyclic Nitrogen: The pH- 3 Sensitive Spin Labels., Dmitrii G. Trofimov , Yuri I. Glazachev , Artem A. Gorodetsky, Denis A. Komarov, Tatyana V. Rybalova, Igor A. Kirilyuk. Статья находится на рецензирование и ее текст статьи приведен в приложение.
Публикации
1. Тормышев В.М., Багрянская Е.Г. Тритильные радикалы: синтез, свойства и применение Russian Chemical Bulletin, Moscow, N 21, Стр. 2278) (год публикации - 2021)
2. Асанбаева Н.Б. Суханов А.А., Дивейкина А.А., Рогожникова О.Ю., Трухин Д.В., Тормышев В.М, Чубаров А.С., Мрьясов А.Г., Генаев А.М., Багрянская Е.Г. W-band 19F ENDOR Spectroscopy for Distance Measurement Using Trityl Spin Probe ABSTRACTS OF THE INTERNATIONAL CONFERENCE, MODERN DEVELOPMENT OF MAGNETIC RESONANCE, Kazan, November 1-5, 2021, стр. 75-76 (год публикации - 2021)
3. Багрянская Е.Г., Асанбаева Н.Б., Крумкачева О.А., Тормышев В.М. TRITYL RADICALS AS SPIN LABELS Book of abstracts of "Modern Synthetic Methodologies for Creating Drugs and Functional Materials", Ekaterinburg, 8-12 November 2021, PL-13 (год публикации - 2021)
4. Багрянская Е.Г., Тормышев В. М., Крумкачева О.А. Тритильные радикалы: свойства и применение в структурной биологии ТЕЗИСЫ ДОКЛАДОВ Всероссийская научная конференция с международным участием "СОВРЕМЕННЫЕ ПРОБЛЕМЫ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ" посвященная 90-летию со дня рождения академика Валентина Афанасьевича Коптюга, стр.19 (год публикации - 2021)
5. Багрянская Елена Григорьевна TRITYL AND TRITYL-NITROXIDE BIRADICALS STRUCTURE, PROPERTIES AND APPLICATION Book of abstract of IX International conference "HIGH-SPIN MOLECULES AND MOLECULAR MAGNETS" XIV Russian-Japanese workshop "OPEN SHELL COMPOUNDS AND MOLECULAR SPIN DEVICES" August 16-20, 2021, Russia, Nuzhnii Novgorod, стр.31 (год публикации - 2021)
Аннотация результатов, полученных в 2022 году
1.Нам удалось расширить круг тритилсодержащих реагентов, предлагаемых для спинмечения олигонуклеотидов. Синтезированы две новые спиновые метки: Finland и OX063, полученные из соответствующих тритилов, вводимых в реакцию форме трикислот. Показана их высокая эффективность в сайт-направленном спин-мечении олигонуклеотидов, модифицированных введением пиперазинового заместителя по 5’-концам. Введение двух новых ТАМ обеспечивает высокую эффективность спин-мечения, дополненную простотой работы с этими высокоустойчивыми реагентами.
2. Методом 19F ENDOR спектроскопии исследована структура и динамика 20-мерных ДНК дуплексов, состоящих из дезоксирибонуклеотида (Fin-DNA20 или OX063-DNA20), меченный TAM (Финский тритил-Fin или OX063) на 5’-конце и комплиментарного олигонуклеотида, с 2’-фтормодифицированным нуклеотидом на 3’-конце. 2'-Фтормодифицированный нуклеотид вводили в первое или второе положение от 3'-конца олигонуклеотида 2 (F1 и F2). Путем анализа полученных экспериментальных данных получены расстояния между центром ТАМ и атомами фтора, а также распределения этих расстояний. Полученные результаты были представлены Phys. Chem. Chem. Phys. 2022, 24, 5982–6001.
3. Нитроксиды имидазолина являются наиболее часто используемыми рН-чувствительными спиновыми зондами и метками благодаря высокой чувствительности параметров спектров ЭПР к изменению рН, их малым размерам и хорошо разработанной химии. Нами синтезировано несколько новых производных 4-(N,N-диалкиламино)-2,5-дигидриоимидазол-1-оксила с функциональными группами, подходящими для специфического связывания. Исследована зависимость параметров их спектров ЭПР от рН. Некоторые из них показали pKa, близкую к 7,4, после изменения pH в нормальном физиологическом диапазоне, а некоторые продемонстрировали монотонное изменение константы сверхтонкого взаимодействия на 0,14 мТл при изменении pH на четыре единицы. Полученные результаты опубликованы в статье Gels, 2022. 11; https://doi.org/10.3390/gels8010011
4. 8-оксо-7,8-дигидрогуанин (oxoG) - это обширное повреждение ДНК, которое может соединяться с аденином и вызывать мутации. Чтобы предотвратить это, клетки обладают гликозилазами для репарации ДНК, которые либо удаляют оксоГ из пар оксоГ:С (бактериальная Fpg, человеческая OGG1), либо удаляют А из пар А:оксоГ (бактериальная MutY, человеческая MUTYH). Ранние этапы распознавания повреждений остаются туманными: предполагалось, что ферменты либо принудительно открывают пары оснований, либо захватывают повреждение в спонтанно открытой паре. Здесь мы модифицируем протокол ЯМР CLEANEX-PM для обнаружения обмена иминопротонов ДНК и анализируем динамику пар oxoG:C и oxoG:A и их неповрежденных аналогов в нуклеотидных контекстах с различной энергией укладки. Даже в условиях плохой укладки пара oxoG:C открывалась не легче, чем G:C, что свидетельствует против захвата внеэлитных оснований Fpg/OGG1. Напротив, oxoG напротив A значительно заселял экстрахелическое состояние, что может способствовать распознаванию MutY/MUTYH.
Наши результаты являются значимыми для понимания механизма поиска повреждения 8-оксогуанина гликозилазами ДНК. Маловероятно, что oxoG в паре с C подвергается захвату гликозилазы, будучи вывернутым из спирали ДНК, так как пара oxoG:C является даже более стабильной, чем пара G:C. Таким образом, OGG1 и FPG должны активно задействовать свои метастабильные конформеры для инициации выворачивания oxoG из спирали ДНК в активные сайты ферментов. С другой стороны, oxoG оказывается более доступным во внеспиральном положении, когда находится напротив A по сравнению с C. Это наблюдение согласуется с литературными данными, что для распознавания oxoG ферментом MutY не важно ни наличие дуплекса, ни наличие пары oxoG:A, что подтверждает механизм внеспирального распознавания 8-оксогуанина ферментом MutY. Таким образом, мы предполагаем, что ключевым этапом раннего распознавания 8-оксогуанина ферментами MutY/MUTYH, но не ферментами FPG/OGG1, может являться его захват во внеспиральном положении. По результатам этих исследований подготовлена статья и находится на рецензирование в журнале JACS.
5. Ранее группа исследователей из ИХБФМ СО РАН и НИОЦ СО РАН обнаружила соединения, ингибирующие in vitro активность человеческого рекомбинантного белка Tdp1. Одним из наиболее эффективных ингибиторов Tdp1 является гидразонотиазольное производное усниновой кислоты OL9-119. Это соединение проявило in vitro на клеточных культурах значительный сенсибилизирующий эффект цитотоксического действия топотекана, ингибитора Tor1, используемого в клинике для лечения рака. Кроме того, было обнаружено, что OL9-119 усиливает противоопухолевое и антиметастатическое действие топотекана in vivo. Мы провели эксперименты по установлению деталей механизма взаимодействия этого фермента в комплексе фермент-ДНК-субстрат-OL9-119 методом ЭПР. Для проведения ЭПР-исследований в структуру фермента была введена спиновая метка, содержащая нитроксильный радикал, а структура ингибитора OL9-119 была модифицирована парамагнитной медью. В работе использовалась усеченная версия белка Tdp1, Δ148Tdp1, представляющая собой фермент, удаленный с N-конца на 148 нуклеотидных остатков, с сохранением каталитического домена, для которого была получена кристаллическая структура с тремя цистеиновыми остатками.
6. Осуществлён синтез ДНК олигонуктеотидов спин-меченных на 5'-конец ДНК спиновыми метками на основе имидазолиновых и имидазолидиновых нитроксильных радикалов, чувствительных к pH / электростатике и к близости молекул воды, с использованием нитроксильных радикалов. Были измерены зависимости ЭПР спектров при разных рН для спиновых меток, для спин-меченных ДНК дуплексов с повреждением и для комплексов дуплексов с ферментом. Сравнение калибровочных кривых спин-меченного амина в олигонуклеотиде в свободном состоянии или же в дуплексе ДНК, показывает, что диапазон чувствительности метки к pH слегка сдвигается в сторону бо́льших значений pH, и наибольшая чувствительность метки в этом случае достигается в диапазоне 6-7.5 ед. pH. Для всех трёх калибровочных кривых величина pKa является одинаковой, а диапазон изменения рН для свободной метки на 0.4 Гс больше чем для спин-меченного олигонуклеотида NO5’ и дуплексов. В спектрах ЭПР дуплексов с ферментом проявилась спектральная компонента, относящаяся к очень малоподвижной спиновой метке, что свидетельствует об образование комплекса FPG+comp23NO5’. Проведено моделирование полученного спектра в предположение медленного изотропного вращения спиновой метки при времени корреляции изотропного вращения спиновой метки τс = 11 нc, что хорошо согласуется с оценкой, сделанной для изотропного вращения FPG (1K82 PDB) и FPG+дуплекса по формуле Стокса-Эйнштейна. Для дальнейших экспериментов и получения информации о рН в комплексе необходимо обеспечить преимущественный вклад в сигнал от комплекса. Вследствие низкой мобильности комплекса ширины линий в спектре ЭПР слишком большие и в Х-диапазоне будет сложно с высокой точностью определить рН по спектрам ЭПР. Поэтому принято решение после оптимизации образца провести эксперименты в W-диапазоне в более высоких магнитных полях, в Казанском физико-техническом институте имени Завойского. Договоренность об этом имеется. После оптимизации концентрации фермента FPG и компонент дуплекса будут проведены эксперименты ESEEM для определения окружения спиновой метки. Такие эксперименты будут проведены в замороженном дейтерированном и протонированном растворах. По результатам работы планируется написание статьи в высокорейтинговый журнал.
Публикации
1. Асанбаева Н.Б., Суханов А.А., Дивейкина А.А., Рогожникова О.Ю., Трухин Д.В., Тормышев В.М., Чубаров А.С., Марьясов А.Г., Генаев А.М., Шернюков А.В., Сальников Г.Е., Ломзов А.А., Пышный Д.В, Багрянская Е.Г. Application of W-band 19F electron nuclear double resonance (ENDOR) spectroscopy to distance measurement using a trityl spin probe and a fluorine label Physical Chemistry Chemical Physics, 24,10, 5982-6001 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1039/d1cp05445g
2. Трофимов Д.Г., Глазачев Ю.И., Городецкий А.А., Комаров, Д.А., Рыбалова Т.В., Кирилюк И.А. 4-Dialkylamino-2,5-dihydroimidazol-1-oxyls with Functional Groups at the Position 2 and at the Exocyclic Nitrogen: The pH-Sensitive Spin Labels MDPI, № 1, том 8, 11, 1-18, Copyright: © 2021 by the authors. Licensee MDPI, Basel, Switzerland. (год публикации - 2021) https://doi.org/10.3390/gels8010011
3. Багрянская Е.Г. Pulse EPR Applications of Trityl and Stable Nitroxide Radicals The 12th Asia-Pacific EPR/ESR Symposium, November 4-7, 2022 Hangzhou, China Zhejiang University University of Science and Technology of China Asia-Pacific EPR/ESR Society,PL-4, стр. 15 (год публикации - 2022)
4. Багрянская Е.Г. SPIN LABELS AND SPIN PROBES. APPLICATION IN STRUCTURAL BIOLOGY Тезисы VI СЕВЕРО-КАВКАЗСКИЙ СИМПОЗИУМ ПО ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ (СТАВРОПОЛЬ, 18-22 АПРЕЛЯ 2022 г.) - СТАВРОПОЛЬ: СКФУ, 2022, VI North Caucasus Organic Chemistry Symposium, стр. 24 (год публикации - 2022)
5. Багрянская Е.Г., Тормышев В.М. Trityl Radicals as Spin Labels and Spin Polarizing Agents in Dynamic Nuclear Polarization Book of Abstracts, X INTERNATIONAL VOEVODSKY CONFERENCE PHYSICS AND CHEMISTRY OF ELEMENTARY CHEMICAL PROCESSES September 5–9, 2022 Akademgorodok, Novosibirsk, Russia, стр.61 (год публикации - 2022)
6. Насонов Д., Овчеренко С.С., Шернюков А.В., Ендуткин А., Жарков Д.О., Багрянская Е.Г. Base-pair opening and closing kinetics in DNA duplex containing oxoG:A mismatch Abstracts of MODERN DEVELOPMENT OF MAGNETIC RESONANCE KAZAN, RUSSIA, 3-7 October, 2022, 170-171 (год публикации - 2022)
7. Овчеренко С.С, Шернюков А.В., Насонов Д.М., Ендуткин А.В., Жарков Д.О., Багрянская Е.Г. Kinetics of Base Pair Opening-Closing Process in DNA Duplex Containing OxoG:C Pair and OxoG:A Mismatch Book of Abstracts of X INTERNATIONAL VOEVODSKY CONFERENCE PHYSICS AND CHEMISTRY OF ELEMENTARY CHEMICAL PROCESSES September 5–9, 2022 Akademgorodok, Novosibirsk, Russia, 154 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.25205/978-5-4437-1350-2
Аннотация результатов, полученных в 2023 году
Сведения о достигнутых конкретных научных результатах в отчетном периоде
(от 1 до 5 стр.)
1. Синтезированы спиновые метки на основе триарилметильных радикалов для ковалентного связывания с белками и олигонуклеотидами и отработаны новые способы введения триарилметильных меток в олигонуклеотиды. Разработаны методики синтеза спиновых меток на основе триарилметильных радикалов с обогащением по 13С. Синтезированные радикалы оказались очень эффективными не только в качестве спиновых меток, но также и в качестве поляризующих агентов для динамической поляризации ядер. По результатам опубликовано три статьи с благодарностью гранту: Ж.Орган. химии,2023, 59, № 6, 790-796; ХИУР. 2023, 31, 678-684; JACS, 2023, 145, 18, 10268-10274 .
2. Синтезированы новые спиновые метки на основе нитроксильных радикалов с жестким коротким линкером с возможностью их ковалентной пришивки к биополимеру по двум положениям и обеспечивающим отсутствие мобильности метки, и позволяющие исследовать динамику протеинов. Разработан метод асимметричной модификации ранее полученного 3,4-бис-(бромметил)-2,2,5,5-тетраэтил-3-пирролин-1-оксила (1), полученного нами ранее.
3. Методом 19F ENDOR (ДЭЯР) спектроскопии исследована структура и динамика 20-мерных ДНК дуплексов, меченных TAM на 5’-конце и с 2’-фтормодифицированным нуклеотидом на 3’-конце комплементарного олигонуклеотида. Экспериментально получены значения расстояний между центром ТАМ и атомами фтора. Распределения этих расстояний сравнены с результатами расчетов МД-моделирования. Показано, что для дуплексов, содержащих на конце пару А-U (для обоих типов меток ТАМ) спектры, рассчитанные без учета расплетения концов дуплекса, лучше согласуются с экспериментальными спектрами. Для дуплексов с концевой парой А-Т расчет с учетом структур с расплетёнными концами лучше коррелируют с экспериментальными спектрами. Короткие расстояния между метками, необходимые для более полного описания всего экспериментального спектра, могут быть получены только при расплетении дуплекса. Результаты представлены [Phys. Chem. Chem. Phys., 2023, 25(35), 23454-23466].
4. Тирозил-ДНК-фосфодиэстераза 1 (Tdp1) – фермент репарации ДНК, который удаляет с 3'-конца цепи ДНК ковалентные комплексы ДНК-топоизомераза 1 (Top1). Методом импульсной ЭПР спектроскопии исследована структура тройного комплекса рекомбинантного белка человека Tdp1–ДНК-субстрат–OL9-119. Осуществлен синтез олигонуклеотидных субстратов, имитирующих природный субстрат Tdp1 и содержащих тритильную ЭПР метку на 3'-конце. Показано, что Tdp1 способна узнавать их в качестве субстрата, но при этом не гидролизовать 3'-модифицированный конец, то есть метка сохраняется в составе олигонуклеотида-субстрата. Результаты метода ЭПР-спектроскопии показали, что основной пик в распределении по расстояниям между нитроксильной и тритильной метками расположен на 2.7 нм, что свидетельствует о сближении спин-меченного цистеина в белке и 3'-конца ДНК в комплексе. Распределение по межспиновым расстояниям не изменяется при добавлении ингибитора. Таким образом, соединение OL9-119, обладая высокой ингибирующей активностью, не препятствует связыванию фермента с ДНК и не влияет на структуру надмолекулярного комплекса. После проведения МД-расчетов по результатам исследований будет подготовлена статья в NAR.
5. 8-Оксо-7,8-дигидрогуанин (oxoG), повреждение ДНК, может неправильно спариваться с аденином и вызывать мутации. Чтобы предотвратить это, клетки обладают гликозилазами репарации ДНК, которые вырезают либо oxoG из пар oxoG:C (бактериальный Fpg, человеческий OGG1), либо A из неправильных пар oxoG:A (бактериальный MutY, человеческий MUTYH). Ранние этапы распознавания повреждений остаются неясными и могут включать принудительное открытие пары оснований или захват спонтанно открытой пары. Используя адаптированный протокол ЯМР CLEANEX-PM для обнаружения имино-протонного обмена ДНК, мы проанализировали динамику oxoG:C, oxoG:A и их неповрежденных аналогов в нуклеотидных контекстах с различной энергией стэкинга. Даже в контексте плохого стэкинга пара oxoG:C открывается не легче, чем G:C, что свидетельствует против внеспирального захвата оснований с помощью Fpg/OGG1. Напротив, oxoG напротив A значительно заселил внеспиральное состояние, что может способствовать распознаванию MutY/MUTYH. По результатам опубликована статья JACS, 2023, 145, 10, 5613-5617.
Додекамер Дрю–Дикерсона (ДДД) относится к одному из известнейших дуплексов ДНК. Он достаточно хорошо изучен разными структурными методами и является эталоном для разработки новых экспериментальных методик и молекулярно-механических силовых полей. Результаты метода дисперсии ядерной спиновой релаксации R1r для иминопротонов ДДД показали, что динамические процессы с характерными временами в милли-микросекундном масштабе не наблюдаются для всех комплементарных пар оснований, кроме предконцевых и концевых, вплоть до температуры 300 К. При этом динамика предконцевой G2 C11 пары сильно отличается, что приводит к намного большему времени жизни открытого состояния пары. Эти данные дополняют информацию о динамике комплементарных пар оснований, полученную ранее методом переноса намагниченности с воды за счет обмена, и делают картину наблюдаемых процессов в ДДД, связанных с процессом открытия-закрытия пар оснований в ДНК, более полной. По результатам опубликована статья в журнале ХИУР, 31 (2023) 665–670
6. Методом многомерной ЯМР спектроскопии была исследована динамика остова неповрежденной и поврежденной ДНК, содержащей метоксиаминовое производное АП сайта. Синтезированы дуплексы олигонуклеотиов, моделирующие неповрежденную и поврежденную ДНК, содержащую метоксиаминовое производное АП сайта, и получен ЯМР-образец дуплекса, состоящий из олигонуклеотидных цепей: 5'-CGCGAUACGCC-3' и 5'-GGCGTCTCGCG-3' и содержащий в центре неправильную пару C-U . Зарегистрированы спектры ЯМР в системах H2O+D2O (в том числе 2D 1H-1H NOESY, TOCSY) и D2O (в том числе 2D 1H-1H NOESY, TOCSY, 1H-31P-COSY, HSQC, 1H-13C-HSQC). Показано, что за исключением неправильной пары C-U, находящейся в середине дуплекса, все основания связаны по каноническому Уотсон-Криковскому типу. Из температурной зависимости спектров сделан вывод о том, что пары C-G, находящиеся между концевыми парами и парами AT, являются прочными и образуются стабильные спирали B-типа. Обнаружено, что часть сигналов особенно C-U и близлежащих пар сужаются при повышении температуры, что свидетельствует о наличие быстрого обмена между структурами, за счет процесса протекающего в центральном фрагменте, который содержит неправильную пару C-U. Отнесение сигналов в спектрах ЯМР и извлечение структурных ограничений, для последующего молекулярного моделирования будет закончено в 2024 году.
7. Методом ЭПР измерены pH в активном центре фермента с применением pH-чувствительной спиновой метки . Получены спектры ЭПР спиновой метки в её протонированном и депротонированном состоянии при 80 К в W-диапазоне. Измерены рН-зависимости спин-меченных олигонуклеотидов, дуплексов и комплексов спин-меченных дуплексов ДНК с одним и двумя разрывами белками Fpg (дикого типа или мутанта E2Q). Методом ESEEM изучена доступность спиновой метки в активном центре путем сравнения в дейтерированной воде для свободного дуплекса и в комплексе в Fpg и Fpg с мутацией E2Q. Обнаружено, что в случае дуплекса с разрывом в 2 нуклеотида зависимость спектра ЭПР от pH для комплекса Fpg дикого типа совпадает с аналогичным для комплекса Fpg с мутацией E2Q, а для дуплекса с разрывом в 1 нуклеотид зависимость спектра ЭПР от pH отличается. Поскольку различие между этими образцами комплексов лежит лишь в замене остатка глутаминовой кислоты (Glu2) на остаток глутамина (Gln2), то и наблюдаемое различие в профилях pH-зависимости спиновой метки связано с разным поведением N-концевого дипептида Pro1–Glu2(или Gln2) от pH. Причины обсуждаются и будут сравнены с МД расчётами. По результатам исследования подготовлена статья и будет послана в печать в ближайшее время.
Публикации
1. Асанбаева Н.Б, Новопашина Д.С., Рогожникова О.Ю, Тормышев В.М., Кехл А, Суханов А.А., Генаев А.М, Ломзов А.А, Беннадит М., Мейерд А, Багрянская Е.Г. 19F electron nuclear double resonance (ENDOR) spectroscopy for distance measurements using trityl spin labels in DNA duplexes Phys. Chem. Chem. Phys., 25, 23454-23466 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1039/D3CP02969G
2. Исаев Н.П., Мельников А.Р., Ломанович К.А., Дугин М.В., Иванов М.Ю., Половяненко Д.Н., Вебер С.Л., Боуман М.К., Багрянская Е.Г. A broadband pulse EPR spectrometer for high-throughput measurements in the X-band Journal of Magnetic Resonance Open, том. 14–15, стр. 100092 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1016/j.jmro.2022.100092
3. Кужелев А.А., Денисенков В., Ахрам И.М., Рогожникова О.Ю., Трухин Д.В., Багрянская Е.Г., Тормышев В.М., Сигурдсон С.Т., Признет, Т.Ф. Solid-Effect Dynamic Nuclear Polarization in Viscous Liquids at 9.4 T Using Narrow-Line Polarizing Agents Journal of American Chemical Society, том. 145, стр. 10268−10274 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1021/jacs.3c01358
4. ОВЧЕРЕНКО C. C. , НАСОНОВ Д. М. , ШЕРНЮКОВ А. В. , БАГРЯНСКАЯ Е. Г. Динамика комплементарных пар азотистых оснований додекамера Дрю–Дикерсона в милли-микросекундном временном масштабе по данным дисперсии ядерной спиновой релаксации R1ρ иминопротонов Химия в интересах устойчивого развития, том 31, №66 стр. 665–670 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.15372/KhUR2023512
5. Овчеренко С.С., Шернюков А.А., Насонов Д.М., Ендуткин А.В., Жарков Д.О., Багрянская Е.Г. Dynamics of 8‑Oxoguanine in DNA: Decisive Effects of Base Pairing and Nucleotide Context Journal of American Chemical Society, том. 145, стр. 5613−5617 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1021/jacs.2c11230
6. РАЙЗВИХ А.Е., ЛОМАНОВИЧ К. А. , РОГОЖНИКОВА О. Ю. , ТРУХИН Д. В. , ТОРМЫШЕВ В. М. , БАГРЯНСКАЯ Е. Г. Мобильность триарилметильных радикалов в водно-глицериновых и водно-трегалозных средах Химия в интересах устойчивого развития, том. 31, № 6, стр. 678-684 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.15372/KhUR2023
7. Трухин Д. В., Рогожникова О. Ю., Сальникова О. И., Тормышев В. М. ПРОСТОЙ И УДОБНЫЙ СИНТЕЗ ДИ(н-БУТИЛ)КАРБОНАТА-(карбонил13С) ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ, том 59, № 6, с. 790–796 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.31857/S0514749223060071
8. C.C. Овчеренко, Д.М. Насонов , А.В. Шернюков , А.В. Ендуткин , Д.О. Жарков , Е.Г. Багрянская ДИНАМИКА ОТКРЫТИЯ ПАР ОСНОВАНИЙ OXOG:C И OXOG:A ПО ДАННЫМ МЕТОДИКИ ЯМР ПЕРЕНОСА НАМАГНИЧЕННОСТИ С ВОДЫ Сборник тезисов X Международной конференции OpenBio, Кольцово, 26-29 СЕНТЯБРЯ 2023, Раздел 3, стр 377 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.25205/978-5-4437-1526-1-199
9. Багрянская Е.Г. The application of advanced EPR methods to study molecular macrosystems containing electron spins ABSTRACTS OF THE INTERNATIONAL CONFERENCES “MODERN DEVELOPMENT OF MAGNETIC RESONANCE” AND “SPIN PHYSICS, SPIN CHEMISTRY, AND SPIN TECHNOLOGY” KAZAN, SEPTEMBER 25–30, 2023, т.1, стр.2 (год публикации - 2023)
10. Багрянская Е.Г., Овчеренко С.С., Асанбаева Н.Б., Шернюков А.В., Тормышев В.М., Жарков Д.О. Pulsed Dipolar EPR Application to Study DNA and Their Complexes with Enzymes Abstracts of 23rd International Society of Magnetic Resonance Conference 2023, Brisbane, Australia, т.1, стр 90 (год публикации - 2023)
11. Н. Асанбаева, Д. Новопашина , О. Рогожникова , В. Тормышев , A. Kehl , A. Meyer , А. Суханов , А. Шернюков , А. Генаев , А. Ломзов , M. Bennati , Е. Багрянская Спектроскопия 19F электронного ядерного двойного резонанса для измерения расстояний в ДНК дуплексах с использованием триарилметильных спиновых меток Тезисы. Всероссийская научная конференция «Современные проблемы органической химии» Новосибирск, 26 - 30 июня 2023 г.., Тезисы. Всероссийская научная конференция «Современные проблемы органической химии» Новосибирск, 26 - 30 июня 2023 г.. стр.109 (год публикации - 2023)
12. Н. Б. Асанбаева, Д. С. Новопашина, О. Ю. Рогожникова, В. М. Тормышев, А. А. Суханов, А. В. Шернюков, А. М. Генаев, А. А. Ломзов, А. Кель, М. Беннати, А. Мейер, Е. Г. Багрянская СПЕКТРОСКОПИЯ 19F-ЭЛЕКТРОН-ЯДЕРНОГО ДВОЙНОГО РЕЗОНАНСА ДЛЯ ИЗМЕРЕНИЯ РАССТОЯНИЙ В ДНК-ДУПЛЕКСАХ Сборник тезисов X МЕЖДУНАРОДНАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ: БИОИНФОРМАТИКОВ, БИОТЕХНОЛОГОВ, БИОФИЗИКОВ, ВИРУСОЛОГОВ И МОЛЕКУЛЯРНЫХ БИОЛОГОВ, Новосибирск Наукоград Кольцово, Раздел 3, стр. 306 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.25205/978-5-4437-1526-1-164
13. А.А. Суханов Отчет НИР по договору от 13.10.2023 №078, "Исследование дуплексов олигонуклеотидов, спин-меченных рН-чувствительными нитроксильными радикалами, а также их комплексов с энзимами методом ЭПР W-диапазона" -, - (год публикации - )
14. - Механизмы окислительных повреждений ДНК раскрыли новосибирские ученые Интерфакс Россия (www.interfax-russia.ru), 17 марта 2023 г., 17 марта 2023 г. (год публикации - )
15. - В Новосибирске описали механизмы повреждений при окислении ДНК ТАСС Наука (nauka.tass.ru),, 17 марта 2023 г. (год публикации - )
16. - Исследователи выявили механизмы окислительных повреждений ДНК Поиск (poisknews.ru), 17 марта 2023 г., 17 марта 2023 г. (год публикации - )
17. - Новосибирские ученые сделали открытие для прогнозирования генетической предрасположенности к СОВА-НЬЮС (sova-news.com), 17 марта 2023 г., 17 марта 2023 г. (год публикации - )
18. - Ученые из НИОХ СО РАН и ИХБФМ СО РАН применили ЯМР для изучения репарации ДНК Сайт СО РАН, 21.03.2023 (год публикации - )
Возможность практического использования результатов
В ходе работы разработан новый метод измерения нанометровых расстояний в биополимеров, который может быть в будущем востребован для решения задач о мишенях лекарственных препаратов.
Часть вышеприведенных результатов была получена на самодельном российском импульсном ЭПР спектрометре нового поколения. Создан импульсный ЭПР-спектрометр Х-диапазона нового поколения обладающий высокой производительностью и чувствительностью в частотном диапазоне 8.5-11.5 ГГц. Спектрометр позволяет проводить исследования в широком диапазоне температур, от 4 до 325 °К. В качестве источника СВЧ измерительный мост использует широкополосный цифровой высокостабильный синтезатор частоты. Мост позволяет работать в режиме прямоугольных импульсов и импульсов произвольной формы с шириной спектра импульса до 350 МГц. В сборке применен прецизионный твердотельный усилитель с выходной мощностью 350 Ватт, который обеспечивает высокую стабильность мощности и фазы импульсов на выходе. При помощи генератора импульсов произвольной формы и ПО реализовано прямое детектирование, позволяющее одним импульсом возбуждать весь спектр. Это существенно сокращает время измерений. В приборе реализовано суперсимметричное 16-шаговое фазовое циклирование, которое нивелирует фазовый и амплитудный дисбаланс каналов, убирает артефакты, улучшая качество регистрируемого сигнала. Уровень когерентного шума СВЧ тракта в 2000 раз ниже уровня некогерентного шума, что делает возможным длительное накопление очень слабых сигналов, например, изотопомер С13 в образце Finland D36 с концентрацией 16 нМ/л (Рис.17). Оборудование позволяет измерять короткие времена релаксации T1 и T2, ~100 нс (DPPH). Глубина модуляции импульсных измерений достигает для PELDOR - 34%, SIFTER – 91%. Это теоретически максимально возможный результат для параметров примененного в спектрометре усилителя мощности. Большая часть работы выполнялась в рамках мега гранта, но синтез тритильных радикалов для тестирование, и проведение некоторых экспериментов проводились в рамках этого гранта РНФ. Поэтому по результатам опубликована статья с благодарностью двум грантам, в том числе и этому гранту РНФ: A broadband pulse EPR spectrometer for high-throughput measurements in the X-band N.P. Isaev, A.R. Melnikov, K.A. Lomanovich, M.V. Dugin, M.Yu. Ivanov, D.N. Polovyanenko, S.L. Veber, M.K. Bowman, E.G. Bagryanskaya, c Journal of Magnetic Resonance Open, V. 14-15, June 2023, 100092
doi:org/10.1016/j.jmro.2022.100092
На основе этой разработки МТЦ СОРАН уже производит усовершенствование ЭПР спектрометров, и планирует выпуск российских импульсных ЭПР спектрометров..